Anti-A, Anti-B, Anti-A+ B MONOKLONAL 0843 Tüp, Slayt, Diamed-ID ve Microplak testler Kan gruplama İnsan kırmızı kan hücrelerinde A ve/veya B antijenlerinin belirlenmesi kalitatif test 1. Serum, plazma veya PBS de %35-45 süspansiyon test kırmızı hücre hazırlayın. IVD 2. Etiketli bir testi slayt üzerine 1 hacim Anti- ABO reaktifi ve 1 hacim test kırmızı hücre süspansiyonu yerleştirin. 2-8ºC de sakla 3. Temiz bir aplikatör çubuğu kullanın ve yaklaşık 20 x 40 mm lik bir alan üzerinde reaktif ve PRENSİP Reaktifler, ilgili ABO antijeni taşıyan test kırmızı hücrelerin direkt aglütinasyonuna (pıhtılaşma) neden olacaktır. Aglütinasyon olmaması genellikle ABO antijeninin yokluğunu gösterir (Sınırlamalara bkz). KLİNİK ÖNEM 1900 yılında, Landsteiner bazı insanların serumunun başkalarının kırmızı hücrelerini aglütine ettiğini keşfetti. Günümüzde dört ortak fenotip bilinir: O, A, B ve AB. A ve B nin altgrupları tespit edilmiştir. İleri Grup Ters Grup ABO Kafkasyalılar Fenotip % A B A,B A1 A2 B O + 0 + 0 0 + 0 A 42 0 + + + + 0 0 B 10 0 0 0 + + + 0 O 44 + + + 0 0 0 0 AB 4 REAKTİFLER Spinreact monoklonal IgM ABO kan gruplama reaktifleri sığır albumin, EDTA ve sodyum klorür içeren bir fosfat tamponda seyreltilmiş fare monoklonal antikoru içerir. Her reaktif daha fazla dilüsyon veya eklemeye gerek olmadan aşağıda belirtilen tüm öneri teknikleriyle optimum dilüsyonda verilmiştir. Lot referans numarası ve son kullanım tarihi için Şişe Etiketine bakın. Ürün Hücre hattı/Klon Renk Kullanılan boya Anti-A 9113D10 Mavi Patent Mavi Anti-B 9621A8 Sarı Tartrazin Anti-A,B 152D12 + 9113D10 Renksiz Yok ÖNLEMLER 1. Reaktifler sadece in vitro diagnostik kullanım için tasarlanmıştır. 2. Eğer bir reaktif şişesinde kırık veya sızıntı varsa, hemen içeriğini atın. 3. Son kullanım tarihi geçmiş reaktifleri kullanmayın (Şişe etiketlerine bakın). 4. Eğer çökelti mevcutsa, reaktifleri kullanmayın. 5. Reaktiflerle çalışılırken tek kullanımlık eldiven ve laboratuar önlüğü gibi koruyucu giysileri giyinmelidir. 6. Reaktifler bir 0,2 mikron kapsül ile biyo-yükünü azaltmak için filtre edilmiştir. Bir şişe bir kez açıldığında içeriği eğer belirgin bozulma ve bulanıklık göstermediği sürece son kullanım tarihine kadar kalabilir. 7. Reaktifler %< 0.1 sodyum azid içerir. Eğer patlayıcı metal azit formu ile bakır ve kurşun borular reaksiyona girerse veya yutulursa, sodyum azit toksik olabilir. Çok miktarda su ile yıkayarak uzaklaştırın. 8. Bilinen hiçbir test insan ve hayvan kaynaklı ürünlerin enfeksiyon etkeni taşımadığını garanti edemez. Kullanım sırasında ve her şişenin ve içeriklerinin imhasında dikkatli olunmalıdır. 9. Dökülen reaktiflerin ve dekontaminasyonunun atılması ile ilgili bilgi için mevcut olan Malzeme Güvenlik Veri Sayfalar’ına bakın. NOTLAR 1. Bir pozitif kontrol ve negatif kontrolun testlerin her bir lotuyla paralel test edilmesi önerilir. Eğer kontrol beklenen sonuçlar göstermiyorsa, testler geçersiz olarak kabul edilmelidir. 2. Hastanın kırmızı hücrelerini tiplendirirken reaktifin negatif kontrol içermesi önemlidir. Çünkü IgG kaplı hücrelerle makromoleküler etkileşimciler yanlış pozitif reaksiyonlara neden olur. 3.Zayıf A veya B altgrupların kan örnekleri (Ax gibi) slaytlar, mikrotiter plakalar veya jel kartlar kullanılarak test edildiğinde yanlış negatif veya zayıf reaksiyona neden olabilir. Tüp tekniği kullanılarak zayıf alt grup tekrar test edilmelidir. 4. Bireyler altı aydan büyükse ABO kan-grubu sonuçları ABO kan grubu onaylanmadan önce bilinen grup A1 ve B hücreleri karşı plazma veya serumlarıyla test edilerek onaylanabilir. 5.Şişe damlalık kullanıldığında bir hacim yaklaşık 40μl olarak alınır. 6.Reaktiflerin kullanımı ve sonuçların yorumlanması reaktifler kullanımdaysa o ülkenin şartlarına göre eğitimli ve kalifiye personel tarafından yapılmalıdır. 7.Kullanıcı diğer teknikleri kullanmak için reaktiflerin uygunluğunu belirlemelidir. SAKLAMA Dondurmayın. Reaktif şişeleri 2 -8ºC ‘de saklanmalıdır. Bu aralığın dışındaki sıcaklıklarda uzun süreli saklanmada reaktifin reaktivitesinin kaybına neden olabilir. GEREKLİ REAKTİFLER VE MATERYALLER 1. Cam test tüpler (10 x 75 mm or 12 x 75 mm). 2. Test tüp santrifüjü. 3. Volumetrik pipetler. 4. Cam mikroskop slaytları 5. Aplikatör çubukları. 6. Fosfat Tampon tuzu (PBS): NaCl 0.9%, pH 7.0 ± 0.2 at 22ºC ± 1ºC.. 7. Pozitif (ideal grup A2B) ve negatif (grupO) kontrol kırmızı hücreler 8. DiaMed ID-Kardlar (Nötr). 9. DiaMed ID-Sentrifüj. 10. DiaMed ID-Diluent: e.g. ID-CellStab. 11. Plaka çalkalayıcısı. 12. Otomatik plaka okuyucu. 13. Onaylı "U" kuyu mikroplakaları 14. Mikroplaka Santrifüjü NUMUNE Antikoagülanlı veya antikoagülansız olarak elde edilen kan örnekleri antijen tiplendirmesi için kullanılabilir. Eğer test gecikirse örnekler 2-8 ° C'de saklanır. EDTA ve sitratlı numuneleri 48 saat içinde tiplendirilmelidir. ACD, CPD veya CPDA-1 içinde toplanan numuneler çekildiği tarihten 35 güne kadar test edilebilir. Tüm kan numuneleri test edilmeden en az iki kez PBS ile yıkanmalıdır. Hemoliz görüntüsüne sahip kan numuneleri güvenilmez sonuç verebilir. PROSEDÜR A. Tüp Tekniği 1. PBS içinde % 2-3 süspansiyon yıkanmış test kırmızı hücreleri hazırlayın.. 2. Etiketli bir test tüpüne 1 hacim Anti- ABO reaktifi ve 1 hacim test kırmızı hücre süspansiyonu koyun. 3. İyice karıştırın ve 1 dakika boyunca oda sıcaklığında inkübe edin. 4. Bütün tüpleri 1000 rcf de 10 dakika boyunca veya uygun bir alternatif zaman ve devirde santrifüjleyin. 5. Kırmızı hücre çökeltisini hafifçe sallayın ve aglütinasyonu makroskopik olarak okuyun. 6. Negatif veya şüpheli bir sonuç gösteren tüpler oda sıcaklığında 15 dakika inkübe edilmelidir. 7.İnkübasyon boyunca 3 ve 4’üncü adımları tekrar edin. B. Slayt Tekniği GSIS01 Ed.2009 hücreleri karıştırın. 4. Oda sıcaklığında slaytı hafiçe eğerek arkaya ve yana doğru 30 saniye kadar çalkalayın bu işlemi 2 dakika süreci içinde arada bir tekrarlayın. 5. Diffüz bir ışık üzerinde 2 dakika sonra makroskopik olarak okuyun ve fibrin ipliklerini aglütinasyon olarak değerlendirip hata yapmayın. 6. Zayıf gerçekleşen reaksiyonlar tüp tekniği ile tekrarlanmalıdır. C. DiaMed-ID Mikro Tipleme Tekniği 1. Bir ID-Dilüent ile % 0.8 süspansiyon yıkanmış test kırmızı hücreleri hazırlayın. 2. Gerektiği kadar mikrotüpleri alüminyum folyodan çıkarın. 3. Uygun mikrotüp içine 50μl test kırmızı hücre süspansiyonu ve 25μl Anti- ABO reaktif yerleştirin. 4. ID Kartları 90 rcf de 10 dakika boyunca ya da uygun alternatif bir zaman ve güçle sentrifüjleyin. 5. Aglütinasyon için makroskopik olarak okuyun. D. Mikroplaka Teknik, “U” kuyularında kullanılan 1.PBS içinde %2-3 süspansiyon yıkanmış test kırmızı hücrelerini hazırlayın. 2. Uygun kuyular içine : 1 hacim Anti- ABO reaktif ve 1 hacim test kırmızı hücre süspansiyonu koyun. 3. Tercihen mikroplaka çalkalayıcı kullanarak uygun şekilde çalkalayın, kuyudan kuyuya bulaşma olmamasına dikkat edin . 4.15 dakika boyunca oda sıcaklığında inkübe edin (zaman kullanıcıya bağlı). 5.140 rcf de 1 dakika boyunca veya uygun alternatif bir zaman ve güçle mikroplakaları sentrifüjleyin. 6. Mikroplaka çalkalayıcısında çalkalanmayı kontrol ederek hücre çökeltisini dikkatlice tekrar süspansiyon hale getirin. 7.Makroskobik olarak veya doğrulanmış otomatik bir okuyucu ile okuyun. 8.Zayıf reaksiyonlar tüp tekniği ile tekrarlanmalıdır. TEST SONUÇLARININ YORUMLANMASI 1. Pozitif: Kabul edilebilir test koşullarında test kırmızı hücrelerinin aglütünasyon ile pozitif sonuç vermesi test hücrelerinde yeterli miktarda ABO antijeni olduğunu gösterir. 2. Negatif: : Kabul edilebilir test koşullarında test kırmızı hücrelerinin aglütünasyon ile negatif sonuç vermesi test hücrelerinde ABO antijeni olmadığını gösterir. 3. Tutarsızlıklar : Eğer alt grup ile elde edilen sonuçlar ileri grup ile ilişkili değil ise, daha fazla araştırma gereklidir. 4. Negatif kontrol kullanarak aglütinasyon edilen hücrelerin test sonuçları hariç tutulmalıdır. Duyarlı hücreler üzerinde reaktif içindeki makromoleküler etkileşimlerin etkisi ile aglütinasyonun oluşabileceği gibi. Reaksiyonların stabilitesi 1. Santrifüjlemeden sonra tüm tüpleri ve mikroplaka testleri okuyun. 2. Özgünlüğü sağlamak ve reaktifin kuruması sebebiyle negatif sonucun yanlışlıkla değerlendirilmesi olanağından kaçınmak için slayt testler iki dakika içinde değerlendirilmelidir. 3. Belirtilerden başka sıcaklıklarda yapılan testlerin sonuçlarının yorumlanmasına dikkat edilmelidir. pozitif SINIRLAMALAR 1. ABO antijenleri tamamen doğumda gelişmez ve bu nedenle daha zayıf reaksiyonlar kordon veya neonatal örnekleri ile oluşabilir. 2. Monoklonal Anti-A,B kullanıldığında, zayıf A veya B alt gruplarının (Ax gibi)kan örnekleri slaytlar, mikrotitre plakalar veya jel kartları test edildiğinde yanlış negatif veya zayıf reaksiyona neden olur. Tüp tekniği kullanılarak zayıf alt grupların tekrar test edilmesi önerilir. 3. Spinreact monoklonal Anti-A ve monoklonal Anti-B sırasıyla Ax ve A3 veya Bx ve B3 antijenlerini tespit etmek için onaylanmamıştır ve bu nedenle bu zayıf A ve B alt gruplara karşı monoklonal Anti-A veya anti-B reaktifliğini iddia etmiyoruz. 4. Depolanan kan, taze kandan daha zayıf reaksiyonlar verebilir. 5. Yanlış pozitif veya yanlış negatif sonuçlar: Test malzemelerinin kirliğine, Saklama, hücre konsantrasyonu, inkübasyon süresi veya sıcaklığın uygunsuzluğuna, Uygunsuz veya aşırı santrifüjleme, Önerilen tekniklerden sapmaya, Kordon numunelerinin Wharton's jeli ile kontamine olmasına sebep olabilir. 6.Kullanıcı burada belirtilen dışında method uygularsa reaktiflerin performansından sorumludur. 7. Önerilen tekniklerden kaynaklanan sapmalar kullanım öncesi doğrulanmış olmalıdır. PERFORMANS ÖZELLİKLERİ 1. Reaktifler, burada belirtilen tüm prosedürler ile karakterize edilmiştir. 2. Serbest kalmadan önce, Spinreact Monoklonal Anti-A, Anti-B ve Anti-A,B’in her bir lotu uygun reaktivite sağlamak için antijen-pozitif kırmızı hücrelerinin bir paneline karşı önerilen teknikler ile test edildi. 3. Monoklonal antikor kaynağının özgünlüğü antijen-negatif hücrelerinin bir panelini kullanarak gösterilmiştir. 4. Spinreact Anti-B “Edinsel -B” kırmızı hücreler ile reaksiyona girmez. 5. Spinreact Monoklonal ABO reaktifler T, Tn veya Cad gibi kript antijenleri tespit edemez. 6. Reaktiflerin gücü Biyolojik Standartlar ve Kontrollerin Ulusal enstitüsüden elde edilen aşağıdaki minimum güc referans standartlarına karşı test edilmiştir: • Anti-A referans standard 88/722 ve / veya • Anti-B referans standard 88/724 7. Reaktifin kalite kontrolü kırmızı hücreler kullanılarak yapıldı ve bu hücreler kullanımdan önce PBS ile iki kez yıkandı. 8. Reaktifler İngiltere Kan Transfüzyon Hizmetleri Rehberinin son sayısında yer alan önerilere uymalıdır BIBLIYOGRAFYA 1. Kholer G, Milstein C. Continuous culture of fused cells secreting antibody of predefined specificity. Nature 1975; 256, 495-497 2. Messeter L et al. Mouse monoclonal antibodies with Anti-A, Anti-B and Anti-A,B specificities, some superior to human polyclonal ABO reagents. Vox Sang 1984; 46, 185-194 3. Race RR, Sanger R. Blood Groups in Man, 6th Edition. Blackwell Scientific, Oxford 1975; Chapter 2. 4. Mollison PL. Blood Transfusion in Clinical Medicine, 8th Edition, Blackwell Scientific, Oxford 1987; Chapter rd 5. Issitt PD. Applied Blood Group Serology, 3 Edition. Montgomery Scientific, Miami 1985; Chapter 6 6. BSCH Blood Transfusion Task Force. Guidelines for microplate techniques in liquid -phase blood grouping and antibody screening, Clinical Laboratory Haematology 1990; 12, 437-460. 7. Guidelines for the Blood Transfusion Service in the United Kingdom. H.M.S.O. Current Edition. 8. British Committee for Standards in Haematology, Blood Transfusion Task Force. Recommendations for evaluation, validation and implementation of new techniques for blood grouping, antibody screening and cross matching. Transfusion Medicine, 1995, 5, 145-150. AMBALAJ Monoclona l Anti-A Monoclona l Anti-B Ref: 1700002 Ref: 1700004 10 ml 10 ml Monoclona l Anti-A+ B Ref: 1700006 10 ml SPINREACT,S.A. Ctra.Santa Coloma, 7 E-17176 SANT ESTEVE DE BAS (GI) SPAIN Tel. +34 972 69 08 00 Fax +34 972 69 00 99. e-mail: [email protected]