MikroRNA`lar ve kanser ile ilişkisi

advertisement
121
DERLEME
MikroRNA’lar ve kanser ile iliþkisi
Dilek Aþcý Çelik, Pýnar Aslan Koþar, Nurten Özçelik
Süleyman Demirel Üniversitesi, Týp Fakültesi, Týbbi Biyoloji AD, Isparta, Türkiye.
Özet
MikroRNA’lar (miRNA’lar), endojen küçük RNA’larýn bir sýnýfýný oluþturan, protein kodlamayan, yaklaþýk
20-23 nükleotid uzunluðunda RNA molekülleridir. Bu moleküllerin özellikle hücre tipinin belirlenmesi ve
hücre farklýlaþmasý olmak üzere pek çok fizyolojik olaylarda ve patolojik durumlarda önemli düzenleyici
roller aldýðý gösterilmiþtir. Ayrýca kanserde hem onkojenik hem de tümör baskýlayýcý rol oynadýklarý açýða
çýkmýþtýr. Pek çok kanserde bazý miRNA’larýn onkogen, bazýlarýnýn ise tümör baskýlayýcý gen gibi iþlev
görmesi, tümör ilerlemesi, metastazý ve invazyonunda miRNA’larýn düzenleyici olduðunu göstermektedir.
miRNA’larýn karsinogenezde etkili olabileceklerinin anlaþýlmasýyla birlikte, farklý kanser türlerinde spesifik
hücre tiplerinde miRNA’larýn ekspresyon seviyelerindeki deðiþimler incelenmiþ, miRNA’larýn normal ve
patolojik dokular arasýnda farklýlýk gösterdiði belirlenmiþtir. Gen ekspresyonunu düzenlediði gösterilen
miRNA’larýn kanser hücrelerindeki seviyelerinin normal hücrelerle karþýlaþtýrýlmasý kanserin taný, takip ve
tedavisinde önem kazanmýþtýr. Son yýllarda iþlevlerinin ve kanserdeki rollerinin anlaþýlmaya baþlanmasý ile
miRNA’lar kanserin moleküler patolojisinin anlaþýlmasýnda ve moleküler hedefe yönelik tedaviler
geliþtirilmesinde umut olmuþtur.
Anahtar Kelimeler: MikroRNA, kanser, onkogen, tümör süpressör gen
Abstract
Micro RNAs and their relation with cancer
MicroRNAs (miRNAs) are a class of small non-coding endogen RNA molecules usually 20-23 nucleotides
at length. They have shown to role in many physiological and pathological processes including cell
characterization and differentiation. Additionally some miRNAs were identified as oncogenes while some
others are tumor-suppressors in cancer. This data indicates their modulatory effects on tumor progression,
invasion and metastasis. After the effects of miRNA’s on carcinogenesis were discovered, expression levels
of miRNAs on different cancer and normal cell lines were evaluated and differences found between normal
and pathological tissues. Comparisons of miRNA expression levels between cancer and normal cells have
gained attention on diagnosis, prognosis ant treatment of cancer. With the increasing knowledge about
miRNA functions and their roles in cancer, they became a new hope for understanding molecular pathology
of cancer and for developing molecular targeting treatment method.
Keywords: MicroRNA, cancer, oncogene, tumor suppressor gene
Yazýþma Adresi: Arþ. Gör. Dilek Aþcý Çelik
Süleyman Demirel Üniversitesi Týp Fakültesi Týbbi Biyoloji AD,
Isparta
Tel: 0246 211 33 36
E-mail: [email protected]
Müracaat tarihi: 15.02.2013
Kabul tarihi:
18.06.2013
S.D.Ü. Týp Fak. Derg. 2013:20(3)/121-127
Aþcý Çelik, miRNA ve kanser
Giriþ
MikroRNA’lar (miRNA’lar), endojen küçük
RNA’larýn (small RNA) bir sýnýfýný oluþturan, protein
kodlamayan RNA molekülleridir (1,2). Yaklaþýk 2023 nükleotit uzunluðunda tek iplikçikli miRNA’larýn
sayýsý insanlarda bini geçmektedir (3). Bu moleküllerin
çeþitli biyolojik olaylarda ve patolojik durumlarda
önemli düzenleyici roller aldýðý gösterilmiþtir.
miRNA’larýn hücresel gen ekspresyonunu
transkripsiyonel ve post transkripsiyonel seviyede
düzenlediði düþünülmektedir (4). mRNA’lara hedef
genin düþük özgüllükte baðlanmasýna, mRNA
yýkýmýna ve translasyonel inhibisyona neden
olabileceði için miRNA’lar gen ifadesinin kontrolünde
önemli rollere sahiptir (5,6).
miRNA’lar özellikle hücre tipinin belirlenmesi ve
hücre farklýlaþmasý olmak üzere pek çok fizyolojik
iþlemde rol alýr. Çeþitli kanserlerde bazý miRNA’larýn
onkogen, bazýlarýnýn ise tümör baskýlayýcý gen gibi
iþlev görmesi, tümör ilerlemesi, metastazý ve
invazyonunda miRNA’larýn düzenleyici olduðunu
göstermektedir (2,7).
RISC içindeki miRNA’lar, hedef mRNA’larý 3' UTR
bölgelerindeki baz eþleþmesine göre belirler (6).
miRNA’lar, mRNA’larýn 3’UTR bölgesine yüksek
oranda komplementerlik gösterirse mRNA degrede
olur. Ancak komplementerlik azaldýkça mRNA’nýn
translasyonu baskýlanýr (11). Genel olarak miRNA’lar
post transkripsiyonel düzenlenmeyi; translasyonu
baskýlayarak veya mRNA hedeflerinin yýkýmýný
saðlayarak yapar (17). (Þekil) Etkilenen mRNA'lar,
RISC-proteinleri boyunca, granüler sitoplazmik ‘Porganlarý’ içinde birikir ve mRNA miktarýnda azalma
gerçekleþir (18,19). Bu durum, mRNA miktarý
ölçülerek miRNA aktivitesinin deðerlendirilebilmesi
açýsýndan önemlidir. miRNA’larýn DNA üzerinde
kodlayan bölgelerde ve mRNA 5’UTR’lerde de
baðlanma bölgeleri bulunduðuna dair bilgiler
literatürde yer almaktadýr. Bu durum miRNA’larýn,
mRNA translasyonunun düzenlenmesinde etkili
olabileceðini de ortaya koymaktadýr (2).
MikroRNA’larýn Biyogenezi ve Moleküler Etki
Mekanizmasý
miRNA’larýn sentezi miRNA genlerinden RNA
polimeraz II (RNA pol II) enzimi aracýlýðýyla öncü
miRNA (pri-miRNA) sentezlenmesiyle baþlar. Saç
tokasý þeklinde oluþan pri-miRNA nükleusta bulunan
bir RNaz olan Drosha ve RNA baðlanma noktasý
bulunan bir protein DGCR8/Pasha’dan oluþan
mikroiþlemci komplekse baðlanýr ve 60 ile 70
nükleotidlik parçalar haline getirilerek pre-miRNA
haline dönüþtürülür (2,6,8-10) Nükleusta oluþan premiRNA’ lar Exportin 5 adý verilen molekül
aracýlýðýyla sitoplazmaya taþýnýr (11). Sitoplazmaya
geçen pre-miRNA RNA-pol III’ün bir türü olan dicer
tarafýndan kesilerek 20-25 nükleotidlik olgun miRNA
ve onun komplementeri miRNA*’dan oluþan çift
sarmal halini alýr (12,13). Daha sonra
miRNA:miRNA* ikilisi helikaz tarafýndan çözülerek
olgun miRNA ve miRNA*’ya dönüþür (3,14). AGO2
adý verilen argonat proteini olgun miRNA’yý
5’ucundan seçer. AGO2, miRNA ve çeþitli proteinler,
kýsaca RISC olarak tanýmlanan RNA ile uyarýlmýþ
susturma kompleksini oluþtururlar. miRNA’yý içeren
RISC kompleksi, mRNA’yý hedefleme yeteneðine
sahiptir (2). Hedef seçiminde “çekirdek-seed” adý
verilen bölge mRNA’ya baðlanmayý saðlayan kýsýmdýr
(15). Bununla birlikte, miRNA ya da mRNA’lara
baðlanan proteinler de hedef seçimini etkiler (16).
122
Þekil: Mikro RNA’larýn biyogenezi
S.D.Ü. Týp Fak. Derg. 2013:20(3)/121-127
123
Aþcý Çelik, miRNA ve kanser
MikroRNA’larýn Onkogenik ve Tümör Baskýlayýcý
Özellikleri
miRNA’lar hedefledikleri mRNA’nýn moleküler
yolaklardaki özelliðine göre onkogenik veya tümör
baskýlayýcý özellik kazanabilir.
Çeþitli kanser vakalarýnda, ekspresyonlarý artan
miRNA’lar onkogen miRNA olarak
adlandýrýlmaktadýr. Onkomir olarak tanýmlanan
miRNA’lar tümör baskýlayýcý genleri ya da hücre
farklýlaþmasýný kontrol eden genleri etkileyerek tümör
geliþimine neden olabilirler (20,21). Tümör baskýlayýcý
miRNA’lar ise tümör oluþumunu, onkogenleri
baskýlayarak engeller.
Kanser oluþumunda etkili olduðu bilinen onkogenik
ve tümör baskýlayýcý miRNA’lar
miR 17-92 genleri: Onkogenik iþlev gören bir gen
ailesidir. 13q31 kromozomunda yer alan polisistronik
bir miRNA’dýr. Bu gen ailesi, miR-17, miR-18a,
miR-19a, miR20a, miR-19b-1, miR-92-1 olmak üzere
altý miRNA kodlar. miR 17-92 ekspresyonu, normal
dokulara göre küçük hücreli akciðer kanseri ve insan
B hücre lenfomasýnda artýþ göstermiþtir. Hematolojik
malignitelerde, meme, kolon, akciðer, pankreas,
prostat, mide ve lenfoma gibi kanser türlerinde yüksek
seviyede ekspresyonu gerçekleþmektedir (22).
Ekspresyon sonucu oluþan miRNA’lar, proliferasyonu
arttýrarak, apoptoz inhibisyonunu saðlayarak ve tümör
anjiyogenezi tetikleyerek kanser oluþumuna neden
olmaktadýr. PTEN ve RB2 gibi tümör baskýlayýcý
genleri hedefleyerek bu genlerin inaktive olmasýný
saðlarlar (1,23).
miR 372 ve miR 373 genleri: Bu onkogenik
miRNA’lar LATS2 tümör baskýlayýcý genin
ekspresyonunu ve p53 aracýlý CDK’ý inhibe ederek
tümör geliþimine neden olmaktadýr (1).
miR-21 geni: Onkogenik fonksiyon gösteren bir
miRNA’dýr. Çeþitli neoplazmlarda PTEN1 ve PDCD4
gibi önemli tümör baskýlayýcý genleri hedef aldýðý
belirlenmiþtir (24). mir-21’in AML (Akut miyeloid
lösemi), KLL(Kronik lenfositik lösemi) gibi
hematolojik malignitelerde ve pankreas, prostat, mide,
kolon, akciðer, meme ve karaciðer kanseri gibi birçok
kanser türünde yüksek seviyede ekspresyonu
gözlenmiþtir (25,26). mir-21’in, PTEN’in mRNA’sýný
hedefleyerek invazyon ve metastaz olaylarýnda etkili
olduðu bildirilmiþtir (1,27).
miR 15a ve miR 16-1 genleri: Bu genler, kanserlerin
pek çok tipinde anahtar rol oynayan anti-apoptoz gen
olan Bcl-2 genini hedefleyerek normal apoptotik bir
yanýt meydana getirmektedir. Bu nedenle belirtilen
genler tümör süpresör gen olarak da iþlev görürler
(1,27).
Let-7 geni: Ýlk keþfedilen miRNA’ olan let-7, ayný
zamanda tümör baskýlayýcý iþlev gösterdiði belirlenen
ilk miRNA’lardandýr. Let-7’nin kanserlerde genellikle
delesyona uðrayan bir kromozomal bölgede bulunmasý
ve gen ifadesinin azalmasýnýn onkojenik farklýlaþma
kaybýna yol açtýðýnýn belirlenmesi tümör baskýlayýcý
etki gösteren bir miRNA olarak kabul edilmesine
sebep olmuþtur (20).
miR-29: miR-29a, miR-29b, miR-29c olmak üzere
üç adet izoformu bulunan miR-29, genlerinin
üyelerinin KLL (26), akciðer kanseri (28), invaziv
meme kanseri (29), AML’de (26) etkili olduðu
gösterilmiþtir.
miR-143: Çeþitli kanser çalýþmalarý bu genin anormal
hücre büyümesini baskýladýðýný göstermiþtir. Meme,
serviks, kolorektal, mesane ve hipofiz tümörlerinde,
miR-143’ün tümör baskýlayýcý olarak görev yaptýðý
bildirilmektedir. Serviks kanserinde hücre
proliferasyonunu baskýladýðý, kolorektal kanser
hücrelerinde ise KRAS ve KRAS’ýn aþaðý sinyal yolunu doðrudan inhibe ettiði gösterilmiþtir (30).
MikroRNA’larýn Kanser ile Ýliþkisi
Protein kodlayan onkogen ve/veya tümör süpresör
genlerdeki deðiþimlerin kansere neden olduðu
bilinmektedir. Son yýllarda tümör oluþumunda
miRNA’larýn da etkili olduðunun gösterilmesi ile
kanserin genetik nedenlerinin daha karmaþýk olduðu
bildirilmiþtir (20). Kanserle iliþkilendirilmiþ genomik
alanlar ya da frajil bölgelerin %50’sinden fazlasýnýn
miRNA’yý kodlayan genlerden oluþmasý miRNA’larýn
kanser patojenezinde önemli olduðunu ortaya
koymuþtur (27). Pek çok çalýþma miRNA’larýn hücre
büyümesi ve apoptoz mekanizmasýnýn
düzenlenmesinde rol aldýðýný göstermiþtir (31,32).
miRNA’larýn karsinogenezde etkili olabileceðinin
anlaþýlmasýyla birlikte, farklý kanser türlerinde spesifik
hücre tiplerinde miRNA’larýn ekspresyon
seviyelerindeki deðiþimler incelenmiþ, miRNA’larýn
normal ve patolojik dokular arasýnda farklýlýk
gösterdiði belirlenmiþtir (33,34). mRNA ekspresyon
profilini belirlemede kullanýlan yöntemler ayný
zamanda miRNA'larýn kanserdeki potansiyel
rolünü/rollerini tespit etmek için yapýlan çalýþmalarda
da kullanýlmaktadýr. Çeþitli miRNA’larýn kanser
hücrelerinin farklýlaþmasýnda, tümör progresyonu ve
metastazýnda spesifik rol oynadýðý gösterilmiþtir (35).
miRNA genleri ve kanser arasýndaki iliþkiyi ortaya
koyan ilk çalýþma Calin ve ark. (36) tarafýndan
S.D.Ü. Týp Fak. Derg. 2013:20(3)/121-127
Aþcý Çelik, miRNA ve kanser
yapýlmýþtýr. KLL hastalarý ile yapýlan çalýþmada,
hastalarýn yarýsýndan fazlasýnda görülen 13q14
delesyonundan daha önce düþünüldüðü gibi bir “tümör
baskýlayýcý” geni hedeflemek yerine miR-15 ve miR16 genlerinin sorumlu olabileceðini göstermiþlerdir.
Cimmino ve ark. (37) BCL2 antiapoptotik geninin
iki farklý miRNA tarafýndan manipüle edildiðini ve
BCL2’nin aþýrý eksprese olduðu lösemi hücre
serilerinde terapötik olarak kullanýlabileceklerini
bildirmiþlerdir.
Solid tümörler ve normal dokularýn miRNA
ekspresyon seviyelerindeki farklýlýk Michael ve ark.
(38) tarafýndan rapor edilmiþtir. Benzer þekilde meme
kanserinde (2), Burkitt’s lenfomada (39), malign
beyin tümörlerinde (40), tiroid kanserinde (41),
akciðer kanserinde (42), prostat kanserinde (23),
mesane kanserinde ve kolon kanserinde miRNA
seviyelerinde deðiþiklikler (43) olduðu çeþitli
çalýþmalarla gösterilmiþtir.
Lamy ve ark. (43), 283 miRNA’nýn mesane, prostat
ve kolon kanserlerinde genomik DNA’daki kopya
sayýsý deðiþimini araþtýrmýþlardýr. Prostat ve kolon
kanserlerinde kopya sayýsýnýn arttýðý bölgelerde
miRNA’larýn yüksek oranda bulunduðunu, kopya
sayýsýnýn azaldýðý bölgelerde ise az olduðunu
gözlemlemiþlerdir. Mesane kanserinde ise kopya
sayýsý ile miRNA seviyesi arasýnda ters iliþkinin
olduðunu belirlemiþlerdir. Takamizawa ve ark.(44)
akciðer kanseri ile ilgili in vitro ve in vivo
çalýþmalarýnda, azalmýþ let-7 ekspresyonu
gözlemlemiþlerdir. Ras ve myc onkogenlerinin, p53
tümör baskýlayýcý gen ile birlikte, akciðer kanserinde
anahtar rol oynadýðý bilinmektedir. Akciðer tümör
dokusunda, normal akciðer dokusuna göre, let-7
seviyesinde belirgin miktarda azalma, Ras proteini
miktarýnda ise dikkat çekici bir artýþ olduðu
saptanmýþtýr. Ras’ýn let-7 ile düzenlenmesinin akciðer
onkogenezinde bir mekanizma olduðunu ileri
sürmüþlerdir (45). Let-7’nin tersine miR17-92
ekspresyonu, akciðer kanserlerinin en agresif þekli
olan küçük hücreli akciðer kanserinde artýþ
göstermektedir (23). Çalýþmalar miR17-92 ile küçük
hücreli akciðer kanserlerinde aþýrý miktarda
sentezlendiði bilinen c-myc onkogeni arasýnda bir
baðýntý olduðunu göstermiþtir (22). Let-7’nin meme
kanserinde de etkili olduðu gösterilmiþ ve artan let7 miktarýnýn meme dokusunda, kanserli hücrelerin
artýþýný yavaþlattýðýný ortaya konmuþtur (46). Ýorio
ve ark. (29) miRNA ifadelerinin normal ve neoplastik
meme dokusu arasýnda farklýlýk gösterdiðini, özellikle
miR-125b, miR145, miR-21 ve miR-155
124
miRNA’larýnýn ifadelerinin meme kanseri dokusunda
oldukça azalmýþ olduðunu gözlemlemiþlerdir. Ayrýca
normal ve kanserli meme dokusu arasýnda görülen
miRNA ifade düzeyi farklýlýklarýnýn tümör seviyesi,
çoðalma indeksi, östrojen ve progesteron reseptörü
ifadesi ve vasküler invazyon ile iliþkili olduðu
gösterilmiþtir.
Chan ve ark. mir-21’in glioblastom hastalarýnda
anlamlý þekilde arttýðýný ve mir-21 susturulmuþ
glioblastom hücre serilerinin kaspaz aktivasyonuyla
apoptozise yönlendiklerini bildirmiþlerdir (40).
Lars ve ark. (47) 106 mesane tümörü ve 11 normal
ürotelyumda 290 miRNA’nýn ekspresyonunu
karþýlaþtýrmýþlar, mir-145, mir-143, mir-125b’nin
miRNA’nýn ekspresyonu azalýrken; mir-21
ekspresyonunun arttýðýný bulmuþlardýr. Kanser
dokusunda mir-145’in en çok ekspresyonu azalan ve
mir-21’in kanser dokusunda en çok ekspresyonu artan
miRNA’lar olduðunu belirtmiþlerdir. James ve ark.
(48) 52 ürotelyal karsinom, 6 ürotelyal karsinom
hücre serisi ve 20 normal ürotelyumla 322 miRNA’nýn
ekspresyonunu RT-PCR yöntemiyle analiz etmiþlerdir.
mir-133b, mir-125b, mir-143, mir-100, mir99a ve
mir-204’ün düþük dereceli ürotelyal karsinoma göre
normal ürotelyumda fazla eksprese olduðunu
saptamýþlardýr. miRNA deðiþimlerinin tümör
progresyonunu tahmin etmede kullanýlabileceðini
bildirmiþlerdir. Chen ve ark. (49) mir-143’ün KRAS
onkogeninin translasyonunu kolorektal kanser
hücrelerinde inhibe ettiðini saptamýþtýr. Akao ve ark.
(50), 63 kolorektal kanser, 65 adenoma dokusu ve
tümör içermeyen komþu dokularda miRNA profilini
incelemiþ, mir-143 ve mir-145’in ifadelerinin kanser
ve adenoma dokularýnda azaldýðýný tespit etmiþlerdir.
Bu azalmanýn tümörogenezin erken safhalarýnda
olduðunu ve mir-143 kullanýlarak yapýlan RNA bazlý
tedavinin kanser hücrelerinin büyümesini inhibe ettiði
belirtmiþlerdir (50). Saetrom ve ark. (51), BMPR1B
geninde mir-125b’nin baðlandýðý bölgedeki
polimorfizmin meme kanseri riskini arttýrdýðýný
belirtmiþlerdir. Çocukluk çaðý lösemilerinde mir125b ekspresyonun arttýðý ve mir-125b’nin onkogenik
potansiyelde olduðu bildirilmiþtir (52).
Kanserde herhangi bir genin tek baþýna incelenmesi
yerine, gen ekspresyonunun genel analizi, taný
açýsýndan önem kazanmýþtýr. DNA mikrodizinlerinin
kullanýmý, onbinlerce genin ayný anda incelenmesine
olanak vermiþtir. Farklý tümörlerin gen ekspresyon
profilleri kýyaslanarak, moleküler bir sýnýflama
yöntemi geliþtirilmiþtir. Bu tür çalýþmalar, gen
ekspresyon profillerinin, baþka özellikleri bakýmýndan
S.D.Ü. Týp Fak. Derg. 2013:20(3)/121-127
125
Aþcý Çelik, miRNA ve kanser
benzerlik gösteren tümörleri birbirinden ayýrabildiðini
ve hastalýðýn klinik seyri ya da tedaviye cevabý
açýsýndan bilgi verdiðini göstermektedir. Son
zamanlarda kanser çalýþmalarýnda miRNA’larýn
ekspresyon düzeyleri normal hücrenin miRNA’sý ile
mukayese edilerek yeni bir yaklaþým oluþturulmuþtur
(1).
Kanser patolojisinde miRNA’nýn iþlevlerini çalýþmak
için up ya da down miRNA ekspresyonunu
düzenlemek önem kazanmýþtýr. Bu amaçla miRNA’
nýn iþlevi çalýþýlýrken antisens inhibitörler,
transgenikler, spesifik promotorlar, real time PCR ve
miRNA mikroarray gibi çeþitli yöntemler
kullanýlmaya baþlanmýþtýr (1,53).
Sonuç
miRNA’larýn keþiflerinden bu yana biyogenezi ve
moleküler etki mekanizmasý ile ilgili oldukça fazla
bilgi edinilmiþtir. Son yýllarda baþta kanser olmak
üzere pek çok hastalýðýn geliþiminde miRNA’larýn
düzenlenmesindeki bozukluklarýn yer aldýðý
gösterilmiþ, ifade profillerinin taný ve tedavide faydalý
kriterler saðlayacaðý öngörülmüþtür. Büyüme, geliþme,
farklýlaþma ve hücre çoðalmasý gibi olaylarý kontrol
eden miRNA’larda kanserleþme sürecinde iþlev
bozukluklarý ortaya çýkmaktadýr. Kanserli dokularda
miRNA’larýn ifade düzeylerinin belirlenmesi ve
hedefledikleri mRNA’larýn deðerlendirilmesi ile
miRNA’larýn kanserin erken tanýsýnda ve tedavi
yöntemlerinin geliþtirilmesinde önemli faydalar
saðlayacaðý düþünülmektedir.
Tümör dokularý ve normal dokularda farklý seviyelerde
ifade edilen miRNA’larýn tanýnmasý, bu miRNA’larýn
insan kanserlerindeki görevlerinin belirlenmesi çeþitli
kanserlerdeki rolünün aydýnlatýlabilmesi için yararlý
olabilir
miRNA ekspresyon profili, miRNA’larýn kanser
patogenezindeki fonksiyonunu araþtýrmak için iyi bir
baþlangýç noktasýdýr. Belirli bir miRNA’nýn kanserli
hücredeki yokluðu ya da fazla sentezlenmesi
miRNA’nýn kanser baþlangýcý ve geliþimindeki özel
rolünü çalýþmaya imkân vermektedir. miRNA’lar
kanserin moleküler patolojisi ile ilgili sorulara cevap
olmaya aday gözükmektedir. Çeþitli kanserlerde
miRNA’larýn taný ve tedavide kullanýlabilmesi için
verilerin belirli standartlara getirilmesi ve hedeflerinin
doðru tanýmlanmasý gerekmektedir. Her miRNA
molekülü çok sayýda farklý mRNA’ya, her mRNA’da
farklý miRNA’lara baðlanabilmektedir. Bu nedenle
miRNA’larýn ifade etkinliklerini ve hedeflerini
belirlemeye yönelik yeni bulgulara ihtiyaç
duyulmaktadýr.
Kaynaklar
1. Zhang L, Huang J, Yang N, Greshock J, Megraw MS,
Giannakakis A,et al. MicroRNAs exhibit high frequency
genomic alterations in human cancer. 2006;103:913641.
2. Le Quesne J, Caldas C. Micro-RNAs and breast cancer.
Moleculer Oncology. 2010;4:230-41.
3. Gregory RI, Chendrimada TP, Cooch N, Shiekhattar
R. Human RISC couples microRNA biogenesis and
posttranscriptional gene silencing (Reprinted from Cell,
vol 123, pg 631-640, 2005). Cell 2007; 131: 63-73.
4. Jackson RJ, Standart N. How do microRNA’s regulate
gene expression? Sci STKE. 2007;1:367.
5. Ambros V. The functions of animal microRNAs.
Nature. 2004; 431(7006):350-5.
6. Bartel DP. MicroRNAs: genomics, biogenesis,
mechanism, and f unction (reprinted from Cell, vol
116, pg 281–297, 2004). Cell 2007;131:11–29.
7. Nicoloso MS, Spizzo R, Shimizu M, Rossi S, Calin
GA. MicroRNAs-the micro steering wheel of tumour
metastases. Nat Rev Cancer 2009;9(4):293-302.
8. Bohnsack MT, Czaplinski K, Gorlich D. Exportin 5 is
a RanGTP-dependent dsRNA-binding protein that
mediates nuclear export of pre-miRNAs. Rna-A
Publication of the Rna Society.2004; 10:185-91.
9. Lund E, Guttinger S, Calado A, Dahlberg JE, Kutay
U. Nuclear export of microRNA precursors. Science
2004; 303: 95-8.
10. Yi R, Qin Y, Macara IG, Cullen BR. Exportin-5
mediates the nuclear export of pre-microRNAs and
short hairpin RNAs. Genes & Development
2003;17:3011-6.
11. Garzon R, Fabbri M, Cimmino A, Calin GA, Croce
CM. MicroRNA expression and function in
cancer.Trends Mol Med. 2006;12(12):580-7.
12. Grishok A, Pasquinelli AE, Conte D, Li N, Parrish S,
Ha I et al. Genes and mechanisms related to RNA
interference regulate expression of the small temporal
RNAs that control C-elegans developmental timing.
Cell 2001;106:23-34.
13. Hutvagner G, McLachlan J, Pasquinelli AE, Balint E,
Tuschl T, Zamore PD. A cellular function for the RNAinterference enzyme Dicer in the maturation of the let7 small temporal RNA. Science 2001;293:834-8.
14. Lin SL, Chang D, Ying SY. Asymmetry of intronic
pre-miRNA structures in functional RISC assembly.
Gene 2005;356:32-8.
15. Ghildiyal M, Zamore PD. Small silencing RNAs: an
expanding universe. Nature Reviews Genetics
2009;10:94-108.
16. Forman JJ, Coller HA. The code within the code:
MicroRNAs target coding regions. Cell Cycle
2010;9(8)1533-41.
S.D.Ü. Týp Fak. Derg. 2013:20(3)/121-127
Aþcý Çelik, miRNA ve kanser
17. Meister G. miRNAs get an early start on translational
silencing. Cell 2007; 131: 25-8.
18. Pillai RS, Bhattacharyya SN, Artus CG, Tabea Z,
Cougot N, Basyuk E, et al. Inhibition of Translational
Initiation by Let-7 MicroRNA in Human Cells. Science
2005; 309:1573-76.
19. Hendrickson DG, Hogan DJ, McCullough HL, Myers
JW, Herschlag D, Ferrell JE, et al. Concordant
Regulation of Translation and mRNA Abundance for
Hundreds of Targets of a Human microRNA. Plos
Biology 2009; 7 (11): e1000238
20. Calin GA, Croce CM. MicroRNA signatures in human
cancers.Nat Rev Cancer. 2006; 6(11): 857-66.
21. Wiemer EAC. The role of microRNAs in cancer: No
small matter. European Journal of Cancer. 2007;43
(10):1529-44.
22. O'Donnell KA, Wentzel EA, Zeller KI, Dang CV,
Mendell JT. c-Myc-regulated microRNAs modulate
E2F1 expression. Nature 2005; 435: 839-43.
23. Hayashita Y, Osada H, Tatematsu Y, Yamada H,
Yanagisowa K, Tomida S, et al. A polycistronic
microRNA cluster, miR-17-92, is overexpressed in
human lung cancers and enhances cell proliferation.
Cancer Res 2005; 65: 9628–32
24. Meng F, Henson RH, Wehbe-Janek H. MicroRNA-21
regulates expression of the PTEN tumor suppressor
gene in human hepatocellular cancer. Gastroenterology
2007;133:647–58.
25. Volinia S, Calin G, Liu CG, Ambs S, Cimmino A,
Petrocca F, et al. A microRNA expression signature
in human solid tumors defines cancer targets. Proc.
Natl. Acad. Sci. USA 2006;103:2257–61.
26. Calin GA, Ferracin M, Cimmino A, Di Leva G, Shimizu
M, Wojcik SE, et al. A microRNA signature associated
with prognosis and progression in chronic lymphocytic
leukemia. New Engl J Med 2005;353(17):1793-801.
27. Calin GA, Sevignani C, Dumitru CD, Hyslop T, Noch
E, Yendamuri S, et al. Human microRNA genes are
frequently located at fragile sites and genomic regions
involved in cancers. Proc Natl Acad Sci USA
2004;101(9):2999-3004.
28. Lin PY ,Yu SL, Yang PC. MicroRNA in lung cancer.
Brýtýsh Journal of Cancer 2010; 103:1144–48.
29. Iorio MV, Ferracin M, Liu C, Veronese A, Spizzo R,
Sabbioni S, et al. MicroRNA gene expression
deregulation in human breast cancer.Cancer Research
2005; 65:7065-70.
30. Slaby O, Svoboda M, Fabian P, Smerdova T,
Knoflickova D, Bednarikova M, et al. Altered
expression of miR-21, miR-31, miR-143 and miR-145
is related to clinicopathologic features of colorectal
cancer. Oncology 2008;72:397-402.
31. Cheng AM, Byrom MW, Shelton J, Ford LP. Antisense
inhibition of human miRNAs and indications for an
involvement of miRNA in cell growth and apoptosis.
126
Nucleic Acids Res 2005; 33:1290-7.
32. Tanno B, Cesi V, Vitali R, Sesti F, Giuffrida ML,
Mancini C et al. Silencing of endogenous IGFBP-5 by
micro RNA interference affects proliferation, apoptosis
and differentiation of neuroblastoma cells. Cell Death
and Differentiation 2005;12:213-23.
33. Sevignani C, Calin GA, Siracusa LD, Croce CM.
Mammalian microRNAs: a small world for fine-tuning
gene expression. Mamm Genome 2006;17(3):189-202.
34. Zhou YM, Chen LJ, Barlogie B, Stephens O, Wu XS,
Williams DR, et al. High-risk myeloma is associated
with global elevation of miRNAs and overexpression
of EIF2C2/AGO2. Proceedings of the National
Academy of Sciences of the United States of America
2010;107:7904-9.
35. Kim YK, Yeo J, Ha M, Kim B, Kim VN. Cell adhesiondependent control of microRNA decay. Molecular Cell
2011;43:1005–14
36. Calin GA, Dumitru CD, Shimizu M, Bichi R, Zupo S,
Noch E, et al. Frequent deletions and down-regulation
of micro- RNA genes miR15 and miR16 at 13q14 in
chronic lymphocytic leukemia.Proc Natl Acad Sci U
SA 2002; 99(24):15524-9.
37. Cimmino A, Calin GA, Fabbri M, Iorio MV, Ferracin
M, Shimizu M, et al. miR-15 and miR-16 induce
apoptosis by targeting BCL2.Proc Natl Acad Sci U S
A 2005;102(39):13944-9.
38. Michael MZ, O’Connor SM, van Holst Pellekaan NG,
Young GP, James RJ. Reduced accumulation of specific
microRNAs in colorectal neoplasia. Mol Cancer Res
2003;1:882–91
39. Metzler M, Wilda M, Busch K, Viehmann S, Borkhardt
A. High expression of precursor microRNA-155/BIC
RNA in children with Burkitt lymphoma. Genes
Chromosomes Cancer 2004;39:167–9.
40.Chan JA, Krichevsky AM, Kosik KS. MicroRNA-21
is an antiapoptotic factor in human glioblastoma cells.
Cancer Res 2005;65:6029–33.
41.He H, Jazdzewski K, Li W, Liyanorachchi S, Nagy R,
Volinia S, et al. The role of microRNA genes in papillary
thyroid carcinoma. Proc Natl Acad Sci USA
2005;102:19075–80.
42.Sevli S, Uzumcu A, Solak M, Ittman M, Ozen M. The
function microRNAs, small potent molecules in human
prostate cancer. Prostate Cancer P D 2010;13:208-17.
43.Lamy P, Andersen CL, Dyrskjøt L, Tørring N, Ørntoft
T, Wiuf C. Are microRNAs located in genomic regions
associated with cancer? Br J Cancer 2006; 95 (10):
1415-8.
44. Takamizawa J, Konishi H, Yanagisawa K, Tomida S,
Osada H, Endoh H, et al. Reduced expression of the
let-7 microRNAs in human lung cancers in association
with shortened postoperative survival. Cancer Res
2004;64(11):3753-6.
45. Johnson SM, Grosshans H, Shingara J, Byrom M,
S.D.Ü. Týp Fak. Derg. 2013:20(3)/121-127
127
Aþcý Çelik, miRNA ve kanser
Jarvis R, Cheng A, et al. RAS is regulated by the let7 MicroRNA family. Cell 2005; 120: 635-47.
46. Yu F, Yao H, Zhu P, Zhang X, Pan Q, Gong C, et al.
let-7 regulates self renewal and tumorigenicity of breast
cancer cells. Cell 2007; 131: 1109-23.
47. Lars D, Marie S and Jesper B. Genomic profiling of
microRNAs in bladder cancer: miR-129 is associated
with poor outcome and promotes cell death in vitro.
Cancer Res.2009;69 4851-60.
48. James W F, Saiful M, Helen C O, Freddie C H.Distinct
microRNA alterations characterize high and low grade
cancer.Cancer res. 2009;69:8472-81.
49. Chen X, Guo X, Zhang H, Xiang Y, Chen J, Yin Y,et
al. Role of miR-143 targeting KRAS in colorectal
tumorigenesis.Oncogene.2009;28(10):1385-92.
50. Akao Y, Nakagawa Y, Hirata I, Iio A, Itoh T, Kojima
K, et al. Role of anti-oncomirs miR-143 and -145 in
human colorectal tumors. Cancer Gene Ther.
2010;17(6):398-408.
51. Saetrom P, Biesinger J, Li S M, Smith D, Thomas L
F, Majzoub K,et al. A risk variant in an miR-125b
binding site in BMPR1B is associated with breast
cancer pathogenesis. Cancer Res. 2009; 69(18): 745965.
52. Gefen N, Binder V, Zaliova M, Linka Y, Morrow M,
Novosel A, et al. Hsa-mir 125b-2 is highly expressed
in childhood ETV6/RUNX1 (TEL/AML1) leukemias
and confers survival advantage to growth inhibitory
signals independent of p53. Leukemia.2010; 24(1):
89-96.
53. Jiang JM, Lee EJ, Gusev Y, Schmittgen TD. Real-time
expression profiling of microRNA precursors in human
cancer cell lines. Nucleic Acids Res 2005;
33:5394–5403.
S.D.Ü. Týp Fak. Derg. 2013:20(3)/121-127
Download