Türk Klinik Biyokimya Derg 2009; 7(2): 61-70 Derleme DNA Hasar› ve Onar›m Mekanizmalar› DNA Damage and Repair Mechanisms Ece Onur* Berrin Tu¤rul** Ferda Bozyi¤it* *Celal Bayar Üniversitesi T›p Fakültesi, Biyokimya Anabilim Dal›, Manisa **Celal Bayar Üniversitesi Fen Edebiyat Fakültesi, Biyoloji Bölümü, Moleküler Biyoloji Anabilim Dal›, Manisa ÖZET Genom, DNA hasar›na neden olan say›s›z farkl› etkene maruz kal›r. Hasar kaynaklar› ekzojen veya endojen olabilir. Yaflayan organizmalar, genetik materyallerini bu etkenlerin oluflturdu¤u hasarlara karfl› korumak amac›yla DNA onar›m mekanizmas›na sahiptirler. Hücre DNA hasarlar›na karfl› farkl› metabolik yollar ile cevap verir. DNA hasar› ve onar›m mekanizmalar›ndaki bozukluklar ile kanser, yafllanma ve birçok genetik hastal›k aras›nda nedensel bir iliflkinin varl›¤› birçok deneysel ve epidemiyolojik veri ile gösterilmifltir. DNA onar›m mekanizmas›, genomik kararl›l›¤›n korunmas› ve hücrenin yaflam›n› sürdürebilmesi için gerekli olan moleküler biyolojik mekanizmalardan birisidir. Anahtar Sözcükler: DNA hasar›, DNA onar›m mekanizmalar›, iyonize radyasyon ABSTRACT Genome is consistently exposed to many factors leading to DNA damage. These damaging factors may be exogenous or endogenous. Living organisms possess DNA repair mechanisms in order to protect their genetic material from these injuries. Once a damage occurs, the cell responds to it with different metabolic pathways. Many experimental and epidemiological studies displayed clues about the casual relationship between DNA damage and repair systems, and cancer, aging and various genetic disease. DNA repair systems are essential biological mechanisms for the cell to survive and to maintain its genomic stability. Key Words: DNA damage, DNA repair mechanisms, Ionizing radiation (IR) DNA HASARI VE ONARIM MEKAN‹ZMALARININ ÖNEM‹ Farkl› DNA hasarlar›na neden olan ultraviyole, X-›fl›nlar›, kimyasal bileflikler gibi çevresel ajanlar, insan genomik DNA’s›n›n bütünlü¤ünü sürekli tehdit etmektedir. Çift ve tek zincir k›r›klar›, insersiyon ve delesyonlar, abazik alanlar ve DNA-protein çapraz ba¤ oluflmas› DNA hasarlar›na örnek olarak verilebilir (1,2). DNA hasar› sadece d›fl faktörlerden kaynaklanmaz. DNA replikasyonu ve rekombinasyonu gibi olaylar s›ras›nda, hücresel metabolizman›n yan ürünü olarak üretilen serbest radikaller gibi endojen ajanlar da DNA hasar›na neden olmaktad›r (3,4). DNA onar›m›, hücre ölümünü, mutasyonu, replikasyon hatalar›n›, DNA hasar›n›n devaml›l›¤›n› ve genomik karars›zl›¤› azaltan bütün ifllemlerde devreye girmektedir. Bu ifllemlerdeki herhangi bir anormallik kanser, yafllanma ve birçok genetik hastal›¤a yol açabilmektedir (5) (fiekil 1). Bu yüzden genomdaki 61 Onur E. ve ark. DNA HASARI VE SONUÇLARI Genetik materyalin moleküler bütünlü¤ünde ekzojen veya endojen faktörlerin etkisiyle meydana gelen tüm de¤ifliklikler "DNA hasar›" olarak adland›r›l›r (1) (fiekil 2). DNA HASARINA NEDEN OLAN ETKENLER A. Endojen (spontan) Etkenler 1. Yanl›fl eflleflmeler, insersiyon/delesyonlar 2. Kimyasal de¤iflikler: deaminasyon, metilasyon fiekil 1. DNA hasar› ve sonuçlar› (3). hasar ve onar›m konusundaki araflt›rmalar, yaln›z yafllanma de¤il birçok genetik hastal›¤›n moleküler mekanizmas›n›n anlafl›lmas›na da yard›mc› olmaktad›r (6,7). Bu derlemede DNA hasar ve onar›m mekanizmalar› güncel bilgiler ›fl›¤›nda temel düzeyde tart›fl›lm›flt›r. 3. Baz kay›plar›: depurinasyon/depirimidinasyon 4. Oksidatif Hasar: 100.000 /hücre/gün 5. Replikasyon hatalar› Deamine bir baz›n onar›lamamas› durumunda nokta mutasyonlar› görülebilir. DNA’dan her gün yaklafl›k 5000 purin baz› (adenin ve guanin) glikozil ba¤lar› hidrolize fiekil 2. DNA‘da hasar oluflturan ajanlar, hasar tipleri ve tamir mekanizmalar› (6). 62 Türk Klinik Biyokimya Dergisi DNA Hasar ve Onar›m› oldu¤u için kaybolur. Bu olaya depurinizasyon ad› verilir. Benzer flekilde DNA dizisinde sitozinin urasile deaminasyonu günde yaklafl›k 100 baz çiftini etkiler. Endojen etkenlerle oluflan hasar onar›lmaz ise somatik mutasyonlar ortaya ç›kar (3,8). B. Ekzojen (çevresel) Etkenler 1. Kimyasal ajanlar: aflotoksin, benzopren, kemoterapi ilaçlar›, alkilleyici ajanlar, vinil klorid, mustard gazlar› v.b 2. Fiziksel ajanlar: UV radyasyon, iyonize radyasyon v.b Benzopren kanserojen olmad›¤› halde hücre içinde okside oldu¤unda kanserojenik hale gelir. Ard›ndan, DNA’da guanin gruplar›na ba¤lanarak G-C ba¤lant›s›n›n aras›na girer ve heliks yap›s›nda bozulmalara neden olur. Ultraviyole ›fl›¤›n›n neden oldu¤u hasarlar (siklobütan ve 6-4 ›fl›n ürünü pirimidin dimerleri) daha çok deri kanseri riski ile ba¤lant›l›d›r. Mutajenik olan UV ›fl›n›, pirimidinlerin kovalent olarak ba¤land›¤› dimer formlar›n›n oluflmas›na neden olur. TT dimer en s›k olufland›r. Timin dimerleri, DNA konformasyonunu ve DNA polimeraz›n aktivitesini bozarak replikasyonu durdurur (3,9). Sisplatin ve alkilleyici ajanlar gibi kemoterapötik ilaçlar DNA’da çift zincir k›r›klar›na ve zincir içi çapraz ba¤lar›n oluflumuna neden olmaktad›r. Reaktif oksijen türlerinin (ROS) neden oldu¤u 100’den fazla oksidatif DNA hasar› tan›mlanm›flt›r. Bu hasarlar›n biyolojik önemi henüz aç›kl›k kazanmamakla birlikte 8-hidroksideoksiguanin’in (8-OH-Gua) mutasyona neden oldu¤u bilinmektedir (10). Bu yap› adeninle baz çifti oluflturabilme yetene¤ine sahip oldu¤u için oldukça mutajeniktir ve replikasyon s›ras›nda adeninle baz çifti oluflturur. G:C yerine insan kanserlerinde en çok görülen mutasyon olan T:A transversiyonuna yol açar (3,11). DNA hasar› hücrede, hasarla bafla ç›kabilecek veya bunu gerçeklefltiremiyorsa programl› hücre ölümünü sa¤layacak bir çok hücresel Cilt 7, Say› 2, A¤ustos 2009 olay› tetikler. Hücre, DNA hasarlar›na karfl› farkl› metabolik yollar ile cevap verir. A¤›r DNA hasarlar› hücrenin apopitoz yolunu aktive ederek hücreyi ölüme götürür ya da hasar DNA onar›m mekanizmalar› ile onar›labilir. Dinamik bir yap›ya sahip olan DNA molekülü, onar›labilen tek biyomolekül olmas› bak›m›ndan önemlidir (12,13). DNA hasar› replikasyon s›ras›nda onar›lamazsa mutasyona ve sonuç olarak genomik karars›zl›¤a neden olur. DNA’da birçok özgün de¤iflimi içine alan genomik karars›zl›k, hem kanserin hem de yafllanman›n önemli bir belirtisidir (14). DNA onar›m sisteminde yaklafl›k 130 gen rol oynar. Bu genlerin kodlad›¤› proteinler onar›m mekanizmalar›nda görev al›rlar. Örne¤in radyasyonun neden oldu¤u DNA hasar›na karfl› protein kinazlar ATM/ATR (ataxi-telenjiektazi mutasyonu/ Rad3-iliflkili) ve p53 sinyal yolu devreye girmektedir (13). DNA onar›m mekanizmalar› genomik stabilitenin devam›n› sa¤layan sistemlerdir (15). DNA hasar›n›n yol açt›¤› yan›tlar Hücrede DNA hasar› olufltu¤unda dört önemli yan›t oluflur; 1. Hasarl› DNA’n›n ç›kar›larak DNA çift zincirinin do¤ ru bir flekilde yeniden yap›land›r›lmas› [DNA onar›m›], 2. DNA hasar› kontrol noktalar›n›n aktivasyonu ile hücre döngüsünün ilerlemesinin engellenmesi, bu flekilde hasarl› genetik materyalin onar›m›na imkan sa¤lanmas› ve hasarl› kromozomlar›n genetik geçiflinin önlenmesi, 3. Hücredeki gen transkripsiyon düzeylerinin hücrenin yarar›na olacak flekilde de¤iflmesi [transkripsiyonel cevap], 4. Ciddi olarak hasar görmüfl hücrelerin elenmesi [programl› hücre ölümü, apopitoz] Bu yan›tlardan herhangi birinin ifllev görmemesi hücre düzeyinde genomik karars›zl›kla, organizma düzeyinde ise genetik hastal›klar, kanser veya yafllanma ile sonuçlan›r (1,13,16). 63 Onur E. ve ark. DNA ONARIM MEKAN‹ZMALARI DNA onar›m hatalar›, genomik karars›zl›kla karakterize sendromlara ve kanser insidans›nda art›fla yol açt›¤›ndan, DNA onar›m›n›n nas›l gerçekleflti¤inin bilinmesi klinik kullan›m aç›s›ndan önem kazanmaktad›r. DNA onar›m genleri iki alt gruba ayr›labilir: a) DNA onar›m›nda sinyal iletimi ve onar›m›n düzenlenmesi ile ilgili genler, b) Hatal› eflleflme onar›m›, baz ve nükleotid ç›karma onar›m› ile ilgili genler (7,17,18). Bu genlerin yer ald›¤› onar›m mekanizmalar› bafll›ca befl grupta incelenebilir. 1. Direkt onar›m ya da hasar›n geri döndürülmesi a) Fotoreaktivasyon b) O-6-metilguanin onar›m› c) Basit tek zincir k›r›klar›n›n ligasyonu 2. Eksizyon (kesip-ç›karma) onar›m› a) Baz eksizyon onar›m› (BER) (base excision repair) b) Nükleotid eksizyon onar›m› (NER) (nucleotide excision repair) c) Mismatch (yanl›fl eflleflme) eksizyon onar›m› (MER) 3. Rekombinasyonal Onar›m 4. SOS Onar›m› arac›l›¤› (Fotoliyaz ve O-6-Metil-DNA-alkiltransferaz) ile gerçekleflen tek ad›ml› reaksiyonlar ile hasar onar›l›r. Siklobütan pirimidin dimerleri (CPDs), fotoliyaz enzimi taraf›ndan ayr›larak hasar giderilir. Reaksiyona fotoreaktivasyon denir (5). UV ile oluflan pirimidin dimerlerine spesifiktir. Sadece pirimidin dimerlerini k›rd›klar›ndan hata olas›l›¤› yoktur (3,19). b) O-6-metilguanin onar›m› O-6-metilguanin, alkilleyici ajanlar varl›¤›nda oluflur ve yüksek oranda mutajeniktir. O-6metilguanin-DNA metil transferaz enzimi, DNA’daki yanl›fl metillenen bazlar›n CH3 gruplar›n› kendi sistein rezidülerine transfer ederek normal guanin oluflumunu sa¤lar. Bunu yaparken enzim de geri dönüflümsüz olarak bask›lanm›fl olur ve ifllev d›fl› kal›r. Bu onar›mda enzimin özgünlü¤ü kadar say›s› da önem kazanmaktad›r. c) Basit tek zincir k›r›klar›n›n ligasyonu X-ray ya da peroksidler gibi baz› ajanlar DNA zincirinde basit k›r›klara neden olabilmektedir. Bir zincirde meydana gelen basit k›r›klar DNA ligaz enzimi ile hemen onar›lmaktad›r. Enzim enerji gerektiren bir reaksiyon ile 5’ fosfat grubu ile 3’OH grubu aras›ndaki fosfodiester ba¤›n› oluflturarak onar›m› gerçeklefltirir (3,18,19). 5. DNA Çift Zincir K›r›klar›n›n Onar›m› 2. Eksizyon (kesip-ç›karma) Onar›m› a) Serbest Uçlar›n Homolog Olmayan Ba¤ lanmas› (NHEJ) Bu onar›m tüm prokaryot ve ökaryot organizmalarda bulunan en önemli onar›m sistemi olup 3 temel basamak içerir (3). Eksizyon onar›m mekanizmas›nda DNA’daki hasarl› baz›n oligonükleotid parçalar› ç›kart›l›p bu bölgenin do¤ru bazlarla doldurulmas› ve oluflan çenti¤in ligasyonla kapat›lmas› ana prensiptir (1). b) Homolog Rekombinasyon (HR) Bu befl onar›m mekanizmas› ile ilgili güncel veriler flu flekilde özetlenebilir. 1. Direkt Onar›m ya da hasar›n geri döndürülmesi a) Fotoreaktivasyon Hasar›n geri döndürülmesi onar›m için en kolay yol gibi görünmesine karfl›n ço¤u durumda termodinamik ve kinetik nedenlerden dolay› pek mümkün de¤ildir. Baz› durumlarda enzim 64 1. Hasar veya hata tan›n›r ve enzimatik olara k bir nükleaz taraf›ndan kesip ç›kar›l›r. 2. DNA polimeraz oluflan boflluklar› doldurur. 3. DNA ligaz son ba¤› kurar ve boflluk tamamen kapan›r (13,15). Türk Klinik Biyokimya Dergisi DNA Hasar ve Onar›m› a) Baz eksizyon onar›m› (BER) (base excision repair) DNA hasar›n›n do¤rudan geri döndürülmesinde, bazlardaki her kimyasal de¤ifliklik kendine özgü bir onar›m mekanizmas› gerektirir. Ancak, hücreler birçok kimyasal hasar tipini düzeltebilecek genel bir onar›m mekanizmas›na ihtiyaç duyarlar. Bu da eksizyon onar›md›r. Yanl›fl yerlefltirilen ve hasarl› bazlar› uzaklaflt›rmak için kullan›lan onar›m mekanizmas›d›r (5,20,21). b) Nükleotid eksizyon onar›m› (nucleotide excision repair) (NER) DNA bazlar› üzerinde büyük eklentiler oluflturan birçok farkl› hasar› tan›yabilen bir onar›m mekanizmas›d›r (22). Bu mekanizman›n mikoplazmadan memelilere kadar genifl bir yelpazedeki organizmalar taraf›ndan kullan›ld›¤› belirlenmifltir. Birçok DNA hasar›n›n özellikle de heliks distorsiyonuna neden olanlar›n onar›m›nda etkindir. ‹nsanlarda güneflten gelen UV ›fl›¤›n›n karsinojenik etkilerine (dimerler) ve sisplatin, 4-nitrokuinolin oksid gibi etkenlerle reaksiyon sonucu oluflan büyük eklentili hasarlara karfl› önemli bir savunma mekanizmas›d›r. NER mekanizmas›n›n iflleyifli (fiekil 3); 1. Hasar›n tan›nmas› 2. Prot ein kompleksinin hasarl› bölgeye ba¤lanmas› 3. ~24-32 nükleotid uzunlu¤unda bir fragment fiekil 3. Nükleotid eksizyon genel genom tamir mekanizmas› (6). Cilt 7, Say› 2, A¤ustos 2009 65 Onur E. ve ark. içinde b›rakacak flekilde lezyonun her iki taraf›ndan hasarl› zincirin kesilmesi (insizyon) 4. Hasar› içeren oligonükleotidin uzaklaflt›r›lmas› (degradasyon) 5. DNA sarmal› üzerinde meydana gelen bofllu¤un DNA polimeraz taraf›ndan doldurulmas› (polimerizasyon) 6. Ligasyon aflamalar›ndan oluflmaktad›r (5). Baflar›l› bir NER prosesi için 30’dan fazla protein gerekmektedir. NER yola¤›nda lezyonlar›n genel özelli¤i DNA kimyas›n›n modifikasyonu ve DNA çift sarmal›n›n helikal distorsiyonudur (13,23,24). Nükleotid eksizyon onar›m mekanizmalar›n›n genom bütünlü¤ünü koruyucu ve hayat›n devaml›l›¤›n› sa¤lay›c› ifllevleri, nükleotid eksizyon onar›m proteinlerinden herhangi birini kodlayan genlerdeki mutasyonlar sonucu oluflan, nadir görülen, otozomal resesif geçiflli üç sendromla anlafl›labilir (1). Bu sendromlar Xeroderma pigmentosum / XP, Cockayne syndrome / CS, Trichothiodystrophy / TTD olarak isimlendirilmifltir (13,16). DSB (double strand break) tamirinde aktif olarak devreye giren üç NER kompleksi XPC/HR23B, XPA/RPA ve ERCC1/XPF olarak adland›r›lmaktad›r (9,13,25). Bu bireylerde günefle duyarl›l›k, baz› organ dokular›nda erken yafllanma, nörolojik bozukluklar ve genellikle UV kaynakl› cilt kanseri insidans›nda art›fl gözlenir (5,6,26). c) Yanl›fl eflleflme (Mismatch) eksizyon onar›m› (MER) Bu onar›m mekanizmas›, DNA replikasyonu esnas›nda meydana gelen ve çift sarmalda anormal boyutlara neden olan, normal bazlar›n hatal› eflleflmesi fleklindeki hatalar› düzeltir (5). DNA replikasyonu do¤rulu¤unun en son sorumlusudur (3,27,28). MER sistemi küçük tek zincir DNA halkalar›n›n ve yanl›fl eflleflmenin relikasyon sonras› tamirinden sorumludur (13). MER iflleyiflinde MSH2-MSH3 ve MSH2-MSH6 gibi iki farkl› heterodimerik kompleksi içeren çeflitli proteinler yer almak66 tad›r. Hatal› eflleflme onar›m mekanizmas› genlerinde mutasyon olan bireylerin kal›tsal nonpolipozal kolon kanserine (HPNCC) yatk›n olduklar› tespit edilmifltir (5,29). 3. Rekombinasyonal Onar›m DNA’lar›n zarar görmüfl parças›n›n de¤ifltirilmesinde kal›p olarak kullan›lacak tamamlay›c› ipli¤in bulunmad›¤› durumda kullan›lan, ve replikasyondan sonra aktif olan bir onar›m mekanizmas›d›r. Timin dimeri gibi bir lezyonu içeren DNA replike olurken DNA polimeraz önce lezyonda duraklar ve yeni sentezlenen zincir boyunca bir boflluk b›rakarak lezyonun üzerinden atlar. Bu bofllu¤a bir yan›t olarak RecA proteini rekombinasyonel bir de¤ifl-tokufl ifllemi ile bafllang›çta hasars›z komplementer dizide bulunan bir segmenti bu bofllu¤a sokup onu tamamlar. Bu ifllem "verici" zincirde bir boflluk b›rak›r. Bu boflluk daha sonra doldurulur (3) (fiekil 4). 4. SOS Onar›m› DNA hasar›n›n yüksek oranda oldu¤u ve di¤er onar›m mekanizmalar›n›n baflar›l› olamad›¤› durumlarda devreye giren acil cevap sistemidir. Hücrelerde çok ciddi DNA zararlar›na karfl› acil yan›t olarak DNA onar›m enzimlerinin say›s›n›n artmas›d›r. DNA sentezi s›ras›nda, bir lezyonun üzerinden atlamak yerine, sistem, DNA polimeraz›n lezyon karfl›s›nda replikasyonu devam ettirmesini sa¤lar. Fakat replikasyonun do¤rulu¤undan fedakarl›k edilir. Bu nedenle hataya meyilli sistem de denir (3,18,19). 5. DNA Çift-Zincir K›r›¤› Onar›m› DNA çift zincir k›r›¤›n›n kaynaklar› aras›nda iyonize radyasyon, topoizomeraz inhibitörleri (etoposid, adriamisin) ve V(D)J rekombinasyonu say›labilir. DNA çift zincir k›r›klar› (DSB), DNA hasar›n›n en y›k›c› fleklidir. Onar›lmazsa kromozomlar›n k›r›lmas›na ve hücre ölümüne varan sonuçlar do¤urabilir. Yanl›fl onar›l›rsa kromozom translokasyonuna ve kansere sebep olur. Türk Klinik Biyokimya Dergisi DNA Hasar ve Onar›m› DSBs’ye neden olan en önemli eksojen ajan iyonize radyasyondur (5). NER ve MER proteinleri DSB onar›m›n› 3 aflamada etkiler. 1. NER ve MER proteinleri HR/NHEJ iflleyiflini fiziksel olarak kolaylaflt›r›r. 2. DNA zinciri ve çeflitli küçük DNA yap› de¤iflikliklerini hat›rlama yetene¤i, primer hasar oluflumunda NER ve MER onar›m›na katk›da bulunur. 3. Çeflitli NER ve MER proteinleri primer hasar›n reorganizasyonu ve hücre siklusu kontrol noktalar›n›n indüksiyonu aras›ndaki sinyal iletiminde önemli rol oynamaktad›r (13,30,31). a) Serbest Uçlar›n Homolog Ba¤lanmas› (NHEJ) fiekil 4. Replikasyon sonras› onar›m (3). Olmayan Ku 70-Ku 80 (DNA-ba¤›ml› protein kinaz katalitik subunit) kompleksleri DNA k›r›k uçlar›na ba¤lan›rlar. DNA ba¤›ml› protein kinaz aktive olarak di¤er proteinlerin hasar bölgesine gelmelerini sa¤lar. Bu protein komplekslerinin formasyonu DNA ligaz IV-XRCC4 kompleksinin k›r›k uçlar› ba¤lamas›n› sa¤lar (13) (fiekil 5). Bu iflleyifl homolog bir kromozomdan faydalanmaks›z›n DNA uçlar›n›n ba¤lanmas›n›n biyokimyasal bir yoludur. Çünkü fiekil 5. Serbest uçlar›n homolog olmayan ba¤lanmas› (NHEJ) (3). Cilt 7, Say› 2, A¤ustos 2009 67 Onur E. ve ark. k›r›k DNA uç lar› ba¤lanabilir durumda olmayabilir ve bu yol bazen genetik bilgide kay›ba neden olur. Homolog olmayan uç ba¤lanmas›ndaki hatalar iyonize radyasyon duyarl›l›¤›na ve immün yetersizli¤e neden olur. X ›fl›nlar› ve peroksidler gibi baz› kimyasallar DNA omurgas›nda k›r›klara yol açar. Tek zincirdeki basit k›r›klar DNA ligaz taraf›ndan onar›l›r. Ancak, DNA ligaz, sadece, 5’-fosfat ve 3’-hidroksil gruplar›na sahip uçlar› birlefltirebilir (5) (fiekil 5). Ayr›ca NHEJ onar›m yolundaki hatalar›n Burkitt lenfoma, KML (Philadelphia kromozomu) gibi kanserlerle iliflkili translokasyonlara da neden oldu¤u gösterilmifltir (3,32). b) Homolog Rekombinasyon (HR) DNA çift zincir k›r›klar›, genetik bilgi korunarak, homolog DNA ile rekombinasyon arac›l›¤›yla onar›labilir. Mayalarda bu yol çift zincir k›r›¤› onar›m›nda bask›n olarak kullan›l›r. ‹nsanda homolog olmayan uç ba¤lanmas› ile eflit önemdedir (5,34). Homolog rekombinasyonda görev alan BRCA1 ve BRCA2 genlerinde olan mutasyonlar ile meme ve over kanserleri aras›nda iliflki bulunmufltur (3,18). DNA HASARI VE ONARIM BOZUKLUKLARI ‹LE ‹L‹fiK‹L‹ HASTALIKLAR DNA onar›m›ndaki hatalar genetik karars›zl›¤a neden olurlar. Kanserlerin büyük bir k›sm›n›n onar›lamam›fl DNA hasar›ndan kaynakland›¤› bilinmektedir. Onar›m sistemindeki bozukluklar da bu ifllemlerde yer alan enzimlerdeki mutasyonlar gibi kanserin kal›tsal türleriyle iliflkilidir. Örne¤in, kal›tsal non-polipozal kolerektal kanser, hatal› eflleflmenin onar›m›ndaki bozukluktan, kolerektal kanser ise baz ç›karma onar›m›ndaki bir bozukluktan kaynaklan›r. Meme kanseri, iyonize radyasyona maruz kalma ile iliflkilidir. Malign prostat kanserli hücrelerde, DNA onar›m genlerinin ekspresyonu ile fonksiyonu aras›ndaki farkl›l›¤›n varl›¤›, prostat tümörü gelifliminde, hatal› DNA onar›m›n›n rolü oldu¤unu düflündürmek68 tedir. DNA metilasyonu, prostat kanseri bafllang›c›nda genetik bir faktör olarak kritik rol oynar (5). DNA onar›m mekanizmalar› aras›nda nükleotid eksizyon onar›m› bilinen en genel ve etkili onar›m mekanizmas›d›r. Nükleotid eksizyon onar›m mekanizmas›n›n yeterince ifllev görememesi yafllanma, kanser oluflumu, çeflitli kal›tsal ve nörodejeneratif bozukluklar ile sonuçlan›r (1,33). Nükleotid eksizyon onar›m mekanizmalar›n›n genom bütünlü¤ünü koruyucu ve hayat›n devaml›l›¤›n› sa¤lay›c› ifllevleri, nükleotid eksizyon onar›m proteinlerinden herhangi birini kodlayan genlerdeki mutasyonlar sonucu oluflan, ender görülen ve resesif olarak kal›t›lan üç farkl› hastal›¤a neden olmaktad›r: Kseroderma pigmentosum (XP), Cockayne Sendromu (CS) ve Trikotiyodistrofi (TTD). Cockayne Sendromu, XP ve TTD fenotiplerinin en belirgin ortak özelli¤i ultraviyole ›fl›¤›na olan afl›r› duyarl›l›kt›r ancak, XP hastalar›ndan farkl› olarak, CS ve TTD hastalar›nda deri tümörleri geliflmez (1). SONUÇ Genomik DNA’da ekzojen ve endojen etkenler sonucunda hasar meydana gelebilmektedir. Çeflitli DNA onar›m mekanizmalar› DNA’da meydana gelen hasar›n tipine uygun olarak devreye girmekte ve hasar tamirinin gerçeklefltirilmesi sonucu genomik kararl›l›k korunmakta ve hücre yaflam›n› sürdürebilmektedir. DNA onar›m mekanizmalar›ndan sorumlu olan gen ve proteinlerdeki de¤iflikliklerin kanser, yafllanma ve baz› genetik hastal›klarla iliflkisi bulunmaktad›r. Önemli bir moleküler biyolojik mekanizma olan DNA onar›m mekanizmas› ile iliflkili gen ve proteinlere yönelik yap›lacak yeni çal›flmalardan elde edilecek bilgiler do¤rultusunda kanser oluflumu, yafllanma süreci ve baz› genetik hastal›klar›n meydana gelmesi ile ilgili klinik aç›dan kullan›labilecek çözümler sunulabilecektir. Türk Klinik Biyokimya Dergisi DNA Hasar ve Onar›m› KAYNAKLAR 1. Kulaks›z G, Sancar A. Nükleotid Eksizyon Onar›m› ve Kanser. Türk Biyokimya Dergisi 2007; 32 (3); 104-11. 2. Martin LJ. DNA Damage and Repair: Relevance to Mechanisms of Neurodegeneration. J Neuropathol Exp Neurol 2008; 67(5): 377-87. 3. Yetiflmifl MR. DNA Onar›m Mekanizmalar›. Bitirme Tezi. Celal Bayar Üniversitesi Fen Edebiyat Fakültesi Biyoloji Bölümü. Dan›flman: Yard. Doç. Dr. Erdal Balcan. 4. Sancar A, Lindsey-Boltz LA, Ünsal-Kaçmaz K, Linn S. Molecular mechanisms of Mammalian DNA repair and the DNA damage checkpoints. Annu Rev Biochem 2004; 73: 39-85. 5. Debeleç Bütüner B, Kantarc› G. Mutasyon, DNA Hasar›, Onar›m Mekanizmalar›, ve Kanserle ‹liflkisi. J Fac Pharm 2006; 35 (2); 149-70. 6. Müftüo¤lu M. DNA Tamiri ve Erken Yafllanma Sendromlar›. Turk J Biochem 2003; 28 (1); 20-4. 7. Griffiths A, Wessler S, Lewontin R, Gelbart W, Suzuki D, Miller J. Introduction to Genetic Analysis. 8th Edition, Chapter 14: Mutation 2005, W.H. Freeman & Company. 8. Duguid JR, Eble JN, Wilson TM, Kelley MR. Differential cellular and subcellular expression of the human multifunctional apurinic/apyrimidinic endonuclease (APE/ref-1) DNA repair enzyme. Cancer Res 1995; 55: 6097-102. [PubMed: 8521399). 9. Arlett, CF, Plowman PN, Rogers PB, Parris CN, Abbaszadeh F, Green MH, McMillan TJ, Bush C, Foray N, Lehmann AR. Clinical and cellular ionizing radiation sensitivity in a patient with xeroderma pigmentosum. Br J Radiol 2006; 79: 510-7. 10. Balajee AS, Bohr VA. Genomic heterogeneity of nucleotide excision repair. Gene 2000; 250: 15-30. 11. Verjat T, Dhenaut A, Radicella JP, Araneda S. Detection of 8-oxoG DNA glycosylase activity and OGG1 transcripts in the rat CNS. Mutat Res 2000; 460: 127-38. [PubMed: 10882853]. 12. Friedberg EC. DNA Repair, s:1-2. Freeman WH and Company, New York, 1984. 13. Zhang Y, Rohde LH, Wu H. Involvement of Nucleotide Excision and Mismatch Repair Mechanisms Current Genomics, 2009, Vol. 10, No. 4. 14. Bohr VA. DNA repair fine structure and its relations to geno-mic instability. Carcinogenesis 1995; 16: 2885-92. 15. Slupphaug G, Kavli B, Krokan HE. The interacting pathways for prevention and repair of oxidative DNA damage. Mutat Res 2003; 531: 231-51. 16. Norbury CJ, Hickson ID. Cellular responses to DNA damage. Annu Rev Pharmacol Toxicol 2001; 41: 367-401. Cilt 7, Say› 2, A¤ustos 2009 17. Tu Y, Tor naletti S, Pfeifer GP. DNA repair domains within a human gene: Selective repair of sequences near the transcription initiation site. EMBO J 1996; 15: 675-83. [PubMed: 8599951]. 18. William S. Klug, Micheal R. Cummings. Genetik Kavramlar. Alt›nc› Bask›dan Türkçe Çeviri. Palme Yay›nc›l›k. Ankara, 2002, 477-481. 19. Geoffrey M. Cooper, Robert E. Hausman. Hücre Moleküler Yaklafl›m. Türkçe çeviri. Üçüncü Bask›. ‹zmir T›p Kitabevi, ‹zmir, 2006, 192-230. 20. Hedge ML, Hazra TK, Mitra S. Early steps in the DNA base excision/single-strand interruption repair pathway in mammalian cells. Cell Res 2008; 18: 27-47. 21. Karahalil B, Hogue BA, de Souza-Pinto NC, Bohr VA. Base excision repair capacity in mitochondria and nuclei: Tissue-specific variations. FASEB J 2002; 16: 1895-902. 22. Hanawalt PC. Subpathways of nucleotide excision repair and their regulation. Oncogene 2002; 21: 8949-56. 23. Tapia A, Auriol J, Forget D, Enzlin JH, Scharer OD, Coin F, Coulombe B, Egly JM. Ordered conformational changes in damaged DNA induced by nucleotide excision repair factors. J Biol Chem 2004; 279: 19074-83. 24. Riedl T, Hanaoka F, Egly JM. The comings and goings of nucleotide excision repair factors on damaged DNA. EMBO J 2003; 22: 5293-303. 25. Fousteri M, Mullenders LH. Transcription-coupled nucleotide excision repair in mammalian cells: molecular mechanisms and biological effects. Cell Res 2008; 18: 73-84. 26. Vodicka P, Stetina R, Polakova V, et al. Association of DNA repair polymorphisms with DNA repair functional outcomes in healthy human subjects. Carcinogenesis 2007; 28: 657-64. 27. Li GM. Mechanisms and functions of DNA mismatch repair. Cell Res 2008; 18: 85-98. 28. Peltomaki P. DNA mismatch repair and cancer. Mutat Res 2001; 488: 77-85. 29. Li GM. Mechanisms and functions of DNA mismatch repair. Cell Res 2008; 18: 85-98. 30. Ahmad A, Robinson AR, Duensing A, van Drunen E, Beverloo HB, Weisberg DB, Hasty P, Hoeijmakers JH, Niedernhofer LJ. ERCC1-XPF endonuclease facilitates DNA doublestrand break repair. Mol Cell Biol 2008; 28: 5082-92. 31. Zhang Y, Rohde LH, Emami K, Hammond D, Casey R, Mehta SK, Jeevarajan AS, Pierson DL, Wu H. Suppressed expression of non-DSB repair genes inhibits gamma-radiation induced cytogenetic repair and cell cycle arrest. DNA Repair (Amst) 2008; 7: 1835-45. 69 Onur E. ve ark. 32. Hazra TK, Das A, Das S, et al. Oxidative DNA damage repair in mammalian cells: A new perspective. DNA Repair 2007; 6: 470-80. 33. Imam SZ, Karahalil B, Hogue BA, et al. Mitochondrial and nuclear DNA-repair capacity of various brain regions in mouse is altered in an age-dependent manner. Neurobiol Aging 2006; 27: 1129-36. 34. Li X, Heyer WD. Homologous recombination in DNA repair and DNA damage tolerance. Cell Res 2008; 18: 99-113. 70 Yaz›flma adresi: Dr. Ece Onur Celal Bayar Üniversitesi T›p Fakültesi Biyokimya Anabilim Dal›, Manisa Tel. : 0 533 282 64 99 E-posta : [email protected] Türk Klinik Biyokimya Dergisi